很多人在液相实验中经常会遇到“分不开”的问题,下面就以人参皂苷类化合物分析为例,一起来看看该问题如何解决?
同学目前所做的尝试
1. 使用T家C18柱,Rg1和Re未实现基线分离(分离度R<1.5);
2. 更换色谱柱为A家C18,在相同条件下,同样未实现Rg1和Re的基线分离;
3. 在A家C18色谱柱的基础上,调整流动相梯度,Rg1和Re可以满足基线分离,但是其他人参皂苷(Rb1、Rb2、Rc和Rd)分离不理想。
同学的诉求是寻找一个合适的HPLC分析方法(包括色谱柱和流动相),能够实现样品中所有人参皂苷的良好分离( Rb1、Rb2、Rc、Rd、Re和Rg1)。
通常来说,建立合适的HPLC分析方法,你需要:
01确定分离目标,明确方法要求;
02解析目标分析物,包括化合物结构、分子量、吸收光谱、pKa和化学稳定性等方面信息;
03对收集到的信息进行综合分析和考虑,选择合适的色谱柱(固定相),设计合适的实验条件;
04使用挑选的色谱柱和实验条件进行分析,根据结果调整色谱柱和实验条件;
05在合适的色谱柱和实验条件下,进行相关验证,最终得到稳定靠谱的实验方法。
针对今天的案例,我们一条条看:
分离目标和方法要求
首先,我们明确这个实验的目的是通过合适的HPLC方法实现人参皂苷化合物 Rb1、Rb2、Rc、Rd、Re和Rg1的分离。
解析目标分析物
建立合适的人参皂苷HPLC分析方法,需要进行全方位的考虑,其中化合物结构是至关重要的点。
人参皂苷( Rb1、Rb2、Rc、Rd、Re、Rf和Rg1等 )是人参的主要成分,都具有相似的基本结构:含有由30个碳原子排列成四个环的甾烷类固醇核。
它们都具备以下特点:
1. 化合物偏中性,具备一定的疏水性;
2. 不同化合物之间的差异在于糖分子的种类和数量,结构比较接近,甚至属于同分异构体;
3. 分子量在800-1200,分子结构偏大(小分子领域)。
选择色谱柱和实验条件
根据人参皂苷化合物的这些特点,我们确定了建立HPLC方法的要点:
1. 偏中性化合物,流动相可以采用非缓冲的水溶液,甚至纯水相;
2. 具备一定疏水性的结构相近化合物,色谱柱考虑采用C18固定相,使用等度或缓梯度;
3. 分子物理尺寸偏大,孔径在分离中有可能发挥重要作用,需要仔细考察此点。
调整色谱柱和实验条件
2020版中国药典人参的含量测定项规定的色谱柱:十八烷基硅烷键合硅胶为填充剂。
但是中国药典方法中并没有明确色谱柱的细节,包括色谱柱规格、固定相粒径和孔径,而这些往往会影响分离效果。
我们先按照该方法,使用相同规格的不同孔径ChromCore 120 C18(120 ?)和ChromCore C18 (180 ?)对人参皂苷Rg1和Re进行分析,得到如下结果:
在药典人参方法下,人参皂苷Rg1和Re在ChromCore 120 C18(120 ?)和ChromCore C18 (180 ?)上都能获得良好的峰型,在ChromCore C18 (180 ?)获得更好的分离度(R>2.0),满足药典要求。
ChromCore 120 C18(120 ?)和ChromCore C18 (180 ?)两款色谱柱采用相同的硅胶基质和键合工艺,主要差别在于孔径。
另外,2020版中国药典西洋参的含量测定项规定的色谱柱:十八烷基硅烷键合硅胶为填充剂。
我们再按照该方法,使用相同规格的不同孔径ChromCore C18(180 ?)和ChromCore 300 C18 (300 ?)对人参皂苷Rg1和Re进行分析(两种人参皂苷在ChromCore 120 C18上共流出,谱图未放):
在药典西洋参方法下,人参皂苷Rg1和Re在ChromCore C18(180 ?)未获得基线分离,而在ChromCore 300 C18 (300 ?)获得更好的分离度,完全满足药典要求。
西洋参方法中梯度斜率高于人参方法(梯度更陡),因此人参方法适用的ChromCore C18(180 ?)在西洋参方法下,无法实现Rg1和Re的基线分离。
由此可见,在分离分子尺寸较大且结构相似的化合物时,不仅要选用合适的固定相官能团,更要注意固定相基质孔径的选择,以达到最佳的分离效果。
得到稳定靠谱实验方法
经过上面实验的对比,最后我们选用ChromCore 300 C18 (300 ?),在中国药典人参方法下,对7种人参皂苷进行分析:
由以上谱图可知,7种人参皂苷在ChromCore 300 C18 (300 ?)上都能获得良好的峰型和分离,完全满足HPLC定性和定量要求。
也就是说,在人参皂苷等物理尺寸较大的化合物HPLC分析中,大孔径固定相色谱柱有利于结构相近组分的分离。
希望今天这个案例的梳理,能够对你的HPLC分析方法开发工作有所启发和帮助。
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